本书包括生物化学实验室安全规范、生物化学实验技术原理和实验项目三篇。第一篇介绍了生物化学实验室安全防护知识及常用试剂、器皿和仪器的使用规范。第二篇介绍了生物大分子制备技术、层析技术、离心技术、分光光度技术、电泳技术和蛋白质免疫印迹技术原理。第三篇既包括基础实验项目，又包括蛋白质、酶、多糖、核酸等生物大分子的提取、纯化、定量、活性测定等综合性实验项目，每一个综合性实验涵盖了多种生物化学实验技术，旨在培养学生对所学知识的综合运用能力和创新实践能力。本书还附有重要的实验技术视频。

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目录
前言
第一篇 实验要求
第一章 生物化学实验基本要求 1
第一节 生物化学实验室学生实验守则 1
第二节 生物化学实验室安全管理 2
第三节 生物化学实验报告格式要求 11
第二章 生物化学实验操作规范 15
第一节 生物化学实验常用器皿使用规范 15
第二节 生物化学实验常用仪器使用规范 17
第二篇 生物化学实验技术
第三章 生物大分子制备技术 22
第一节 蛋白质的制备 23
第二节 酶的制备 26
第三节 核酸的制备 29
第四节 多糖的制备 33
第四章 层析技术 38
第一节 层析技术的原理 38
第二节 层析的操作形式 50
第三节 高效液相色谱技术 57
第五章 离心技术 63
第一节 离心技术简介 63
第二节 离心机的主要构造及使用 65
第六章 分光光度技术 70
第一节 分光光度技术的原理 70
第二节 分光光度计的构造及使用 73
第七章 电泳技术 76
第一节 电泳技术的原理 76
第二节 电泳技术的类型 78
第三节 电泳常用的染色方法 88
第八章 蛋白质印迹技术 91
第三篇 实验项目
第九章 基础实验项目 97
实验一 蛋白质及氨基酸的呈色反应 97
实验二 酪蛋白的制备 100
实验三 蛋白质的沉淀作用和等电点测定 102
实验四 蛋白质透析法脱盐 105
实验五 氨基酸的纸层析分离 106
实验六 分子筛层析法脱盐 108
实验七 分子筛层析法分离纯化蛋白质及分子质量的测定110
实验八 Folin-酚试剂法测定蛋白质浓度114
实验九 紫外吸收法测定蛋白质浓度116
实验十 考马斯亮蓝染色法测定蛋白质浓度117
实验十一 醋酸纤维素膜电泳分离血清蛋白119
实验十二 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离卵清蛋白 122
实验十三 不连续SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质的分子质量 125
实验十四 唾液淀粉酶的动力学性质 127
实验十五 胰蛋白酶的制备及酶活力测定 130
实验十六 温度、pH对糖化酶活力的影响 133
实验十七 果蔬中维生素C的定量测定（2,6-二氯酚靛酚滴定法） 136
实验十八 荧光光度法定量测定核黄素（维生素B2） 139
实验十九 DEAE-纤维素薄层层析分离鉴定核苷酸 141
实验二十 植物基因组DNA的提取 143
实验二十一 PCR扩增小麦持家基因Rubisco 145
实验二十二 琼脂糖凝胶电泳分离DNA片段 147
实验二十三 还原糖的提取及含量测定 148
实验二十四 糖酵解中间产物的测定 150
实验二十五 脂肪酸氧化——酮体的生成 152
实验二十六 细胞活力和细胞凋亡检测 154
第十章 综合性实验项目 156
综合性实验一 凯氏定氮法测定牛奶的蛋白质含量 156
综合性实验二 大蒜超氧化物歧化酶的提取、纯化及性质测定 166
综合性实验三 鸡卵类黏蛋白的分离纯化、活性及分子质量测定 173
综合性实验四 动物组织转氨酶的提取及活力测定 182
综合性实验五 酵母蔗糖酶的提取、纯化及酶学性质研究 187
综合性实验六 植物过氧化物酶的提取及同工酶鉴定 195
综合性实验七 蛋白质印迹检测重组大肠杆菌丝氨酸羟甲基转移酶 198
综合性实验八 酵母RNA的提取、鉴定及定量测定 202
综合性实验九 兔肝组织总RNA的提取及RT-PCR 208
综合性实验十 兔肝组织DNA的提取及定量测定 213
综合性实验十一 质粒载体构建与蓝白斑筛选 217
综合性实验十二 大豆多糖的提取、单糖组成及抗氧化活性测定 220
综合性实验十三 辅酶 Q10的超临界流体萃取与 HPLC分离 225
参考文献 231
附录一 常用标准溶液的配制和标定 232
附录二 常用缓冲液的配制方法 236
附录三 硫酸铵饱和度的调整用表 241
附录四 柱层析材料 243